微藻是水中微小的“绿色工厂”，研究它们需要先让这些活泼的小生命“安静”下来，固定在载玻片上，才能用显微镜观察它们的形态和结构。这个过程就像给微藻拍一张清晰的“证件照”。以下是具体操作步骤和注意事项，简单易懂，一起学起来！

 一、主要操作步骤

1. 取样——找到目标微藻  

用干净的采样瓶（或试管）采集水样，避免污染。如果是培养的微藻，可直接用移液枪吸取少量样本。

2. 固定——让微藻“定住不动”  

根据微藻类型选择固定剂（常用福尔马林或卢戈氏碘液）：  

– 福尔马林：1-4%浓度，每10毫升水样加1-2滴，摇晃混匀。  

– 卢戈氏碘液：直接滴入水样至颜色变浅棕色（微藻被染色并固定）。  

静置10-30分钟，让微藻沉淀到容器底部。

3. 清洗——去除多余化学试剂  

用吸管吸去上层液体，加入少量清水轻轻冲洗沉淀的微藻，重复2-3次（避免冲散样本）。

4. 制片——把微藻“粘”在玻片上  

– 用吸管吸取沉淀的微藻，滴1-2滴在载玻片中央。  

– 盖上盖玻片（从一侧缓慢放下，避免产生气泡）。  

– 若样本太稀，可自然晾干几秒后再盖片。

5. 镜检——显微镜下的“微世界”  

– 将载玻片放在显微镜载物台上，先用低倍物镜（如10×）找到目标区域。  

– 切换高倍物镜（如40×）观察细节，调节细准焦螺旋使图像清晰。  

– 拍照或记录观察到的微藻形态（如形状、颜色、结构）。

 二、注意事项——安全又高效

1. 安全第一！  

   – 福尔马林、戊二醛等有刺激性，需戴手套和口罩，在通风处操作。  

   – 废液勿直接倒入下水道，需收集后按实验室规范处理。

2. 固定时间别太久  

   – 福尔马林固定超过1小时可能使细胞变形，及时清洗或观察。  

   – 卢戈氏碘液染色后需尽快观察，避免褪色。

3. 浓度要精准  

   – 固定剂浓度过高会破坏细胞，过低则固定不彻底。  

   – 新手建议先用低浓度（如1%福尔马林），逐步调整。

4. 样本别太密或太稀  

   – 微藻密度过高时，可用清水稀释；过稀则需离心浓缩。

5. 盖玻片要轻拿轻放  

   – 气泡会影响观察，盖片时倾斜45°缓慢贴合液体。

6. 显微镜使用小技巧  

   – 高倍镜下勿用粗准焦螺旋，避免压碎玻片。  

   – 光线调至柔和（太亮会过曝，太暗看不清）。

 三、为什么需要固定微藻？  

微藻在水中会游动或漂浮，直接观察可能模糊不清。固定后不仅能“定格”它们的形态，还能杀死微生物，方便长期保存样本。比如：  

– 福尔马林适合保存细胞结构；  

– 卢戈氏碘液能同时染色淀粉等结构，让细胞更清晰。

 微藻固定镜检就像给这些“微观小精灵”按下暂停键，帮助科学家看清它们的真面目。只需按步骤操作，注意安全细节，你也能轻松探索水中的奇妙世界！如果第一次失败，别气馁——多练习几次，就能拍出微藻的“完美证件照”啦！